Robustart Taq DNA Polymerase
Robustart Taq DNA Polymerase เป็น DNA polymerase ที่เริ่มต้นอย่างรวดเร็วผลิตภัณฑ์นี้ไม่เพียงแต่สามารถยับยั้งปฏิกิริยาที่ไม่เฉพาะเจาะจงที่เกิดจากการหลอมไพรเมอร์หรือการรวมตัวของไพรเมอร์แบบไม่เฉพาะเจาะจงได้ดีขึ้นในกระบวนการเตรียมและขยายระบบ PCRดังนั้นจึงมีความจำเพาะที่ดีเยี่ยมและมีประสิทธิภาพมากกว่าในการขยายเทมเพลตที่มีความเข้มข้นต่ำ และเหมาะสำหรับปฏิกิริยาการขยาย PCR แบบมัลติเพล็กซ์นอกจากนี้ ผลิตภัณฑ์นี้มีความสามารถในการนำไปใช้งานที่ดีมาก และสามารถได้ผลลัพธ์การขยายที่เสถียรในปฏิกิริยา PCR ประเภทต่างๆ
ส่วนประกอบ
1.5 U/μL Robustart Taq DNA โพลีเมอเรส
2.10 × PCR Buffer II (ไม่มี Mg²+) (อุปกรณ์เสริม)
3.MgCl 25 มิลลิโมลาร์2(ไม่จำเป็น)
* 10 × PCR Buffer II (ฟรี Mg²+) ไม่มี dNTP และ Mg²+ โปรดเพิ่ม dNTP และ MgCl2เมื่อเตรียมระบบปฏิกิริยา
การใช้งานที่แนะนำ
1.ขยายเสียงอย่างรวดเร็ว
2.การขยายเสียงหลายรายการ
3.การขยายเลือด สำลี และตัวอย่างอื่นๆ โดยตรง
4.การตรวจหาโรคระบบทางเดินหายใจ
สภาพการเก็บรักษา
-20°C สำหรับการเก็บรักษาในระยะยาว ควรผสมให้เข้ากันก่อนใช้งาน หลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลายบ่อยๆ
*หากเกิดฝนตกหลังจากการแช่เย็นถือว่าเป็นเรื่องปกติแนะนำให้ปรับให้สมดุลกับอุณหภูมิห้องก่อนผสมและใช้งาน
คำจำกัดความของหน่วย
หน่วยแอคทีฟหนึ่งหน่วย (U) หมายถึงปริมาณของเอนไซม์ที่รวมดีออกซีไรโบนิวคลีโอไทด์ 10 นาโนโมลเข้าไปในวัสดุที่ไม่ละลายกรดที่อุณหภูมิ 74°C เป็นเวลา 30 นาที โดยใช้ DNA อสุจิปลาแซลมอนที่ถูกกระตุ้นเป็นเทมเพลต/ไพรเมอร์
ควบคุมคุณภาพ
1.ความบริสุทธิ์ของอิเล็กโตรโฟเรติก SDS-PAGE มากกว่า 98%
2.ความไวในการขยาย การควบคุมแบบแบตช์ต่อแบตช์ ความเสถียร
3.ไม่มีกิจกรรมของนิวคลีเอสจากภายนอก ไม่มีการปนเปื้อนของเอนโดนิวคลีเอสหรือเอ็กโซนิวคลีเอสจากภายนอก
คำแนะนำ
การตั้งค่าปฏิกิริยา
ส่วนประกอบ | ปริมาณ (ไมโครลิตร) | ความเข้มข้นสุดท้าย |
10 × PCR Buffer II (ฟรี Mg²+)a | 5 | 1× |
dNTP (10mM ต่อ dNTP) | 1 | 200 ไมโครโมลาร์ |
MgCl 25 มิลลิโมลาร์2 | 2-8 | 1-4 มม |
โรบัสทาร์ต Taq DNA Polymerase (5U/μL) | 0.25-0.5 | 1.25-2.5 ยู |
25 × ไพรเมอร์ผสมข | 2 | 1× |
แม่แบบ | - | <1 ไมโครกรัม/ปฏิกิริยา |
ddH2O | ถึง 50 | - |
หมายเหตุ:
1) ก.บัฟเฟอร์ไม่มี dNTP และ Mg²+ โปรดเพิ่ม dNTP และ MgCl2เมื่อเตรียมระบบปฏิกิริยา
2)ข.หากใช้สำหรับ qPCR/qRT-PCR ควรเพิ่มโพรบฟลูออเรสเซนต์ลงในระบบปฏิกิริยาโดยปกติแล้วความเข้มข้นของไพรเมอร์ขั้นสุดท้ายที่ 0.2 μM จะให้ผลลัพธ์ที่ดีหากประสิทธิภาพของปฏิกิริยาไม่ดี ความเข้มข้นของไพรเมอร์สามารถปรับได้ในช่วง 0.2-1 μMโดยทั่วไปความเข้มข้นของโพรบจะถูกปรับให้เหมาะสมในช่วง 0.1-0.3 μMการทดลองไล่ระดับความเข้มข้นสามารถทำได้เพื่อค้นหาส่วนผสมที่ดีที่สุดของไพรเมอร์และโพรบ
โปรโตคอลการหมุนเวียนความร้อน
PCR ปกติกระบวนการ | |||
ขั้นตอน | อุณหภูมิ | เวลา | รอบ |
การเสียสภาพก่อนกำหนด | 95 ℃ | 1-5 นาที | 1 |
การเสียสภาพ | 95 ℃ | 10-20 วินาที | 40-50 |
การหลอม / การขยาย | 56-64 ℃ | 20-60 วินาที |
PCR ที่รวดเร็วกระบวนการ | |||
ขั้นตอน | อุณหภูมิ | เวลา | รอบ |
การเสียสภาพก่อนกำหนด | 95 ℃ | 30 วินาที | 1 |
การเสียสภาพ | 95 ℃ | 1-5 วินาที | 40-45 |
การหลอม / การขยาย | 56-64 ℃ | 5-20 วินาที |
หมายเหตุ
1.อัตราการขยายของ DNA polymerase เร็วไม่ควรน้อยกว่า 1 kb/10 sอัตราการเพิ่มและลดลงของอุณหภูมิ โหมดควบคุมอุณหภูมิ และประสิทธิภาพการนำความร้อนของเครื่องมือ PCR ต่างๆ นั้นแตกต่างกันอย่างมาก ดังนั้นจึงขอแนะนำให้ปรับสภาวะปฏิกิริยาที่เหมาะสมที่สุดสำหรับเครื่องมือ PCR แบบเร็วเฉพาะ
2.ระบบนี้สามารถปรับเปลี่ยนได้สูง โดยมีความจำเพาะและความไวสูงกว่า
3.เหมาะสำหรับใช้เป็นรีเอเจนต์การตรวจจับ PCR ความไวสูง และสามารถนำมาใช้ในปฏิกิริยาการขยาย PCR แบบมัลติเพล็กซ์
4.กิจกรรมของโพลีเมอเรส 5 ′→ 3′, กิจกรรม exonuclease 5 ′→ 3′;ไม่มีกิจกรรม exonuclease 3 ′→ 5′;ไม่มีฟังก์ชันพิสูจน์อักษร
5.เหมาะสำหรับการทดสอบ PCR และ RT-PCR ในเชิงคุณภาพและเชิงปริมาณ
6.จุดสิ้นสุด 3′ ของผลิตภัณฑ์ PCR คือ A ซึ่งสามารถโคลนเป็นเวกเตอร์ T ได้โดยตรง
7.แนะนำให้ใช้วิธีสามขั้นตอนสำหรับไพรเมอร์ที่มีอุณหภูมิการอบอ่อนต่ำ หรือสำหรับการขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวมากกว่า 200 bp